Invitrogen SYBR Safe DNA凝膠染料

聚丙烯酰胺<b>凝膠</b>中<b>DNA</b>的染色檢測

與瓊脂糖<b>凝膠</b>不同，聚丙烯酰胺<b>凝膠</b>灌制時不能加入溴化乙錠，因為此<b>染料</b>會影響丙烯酰胺的聚合。然而，電泳后可用溴化乙錠進行聚丙烯酰胺<b>凝膠</b>的染色。由于聚丙烯酰胺會猝滅溴化乙錠的熒光，所以檢測 <b>DNA</b> 的靈敏度降低。電泳后也可用核酸<b>染料</b><b>SYBR</b> Gold ( Molecular Probes) 進行聚丙烯

瓊脂糖<b>凝膠</b>中<b>DNA</b>的檢測

瓊脂糖<b>凝膠</b>中的核酸通過染色，可以在波長為 300 nm 的紫外燈下檢測。介紹瓊脂糖<b>凝膠</b>中核酸染色的兩種方法：溴化乙錠（ethidium bromide, EB ) 染色法和 <b>SYBR</b> Gold 染色法。本實驗來源「分子克隆實驗指南第三版」黃培堂等譯。

<b>DNA</b> 結合蛋白的<b>凝膠</b>阻滯分析實驗

<b>凝膠</b>阻滯試驗分析 <b>DNA</b> 結合蛋白的方法是 Fried 和 Crothers(1981) 發明的，它是第一次為大腸桿菌乳糖阻抑物與其 <b>DNA</b> 結合位點的相互作用提供了動態的分析方法。本實驗來源于分子克隆實驗指南（第三版）下冊，作者：〔美〕J. 薩姆布魯克 D.W. 拉塞爾。

<b>DNA</b>的瓊脂糖<b>凝膠</b>電泳實驗

<b>DNA</b>電泳可用于：（1）分離不同大小的DNA片段；（2）鑒定目的DNA片段；（3）純化和回收DNA片段。

脈沖場<b>凝膠</b>電泳制備<b>DNA</b>（酵母完整<b>DNA</b>的分離）

制備用于電泳的酵母 <b>DNA</b>，先用酶破壞酵母細胞胞壁，然后在熔化的低熔點瓊脂糖中混懸，制成栓。將栓浸入含蛋白酶的裂解緩沖液，以加速細胞裂解和除去蛋白質。此方法在 Schwartz 和 Cantor (1984) 最初介紹的方法上略有改進，它可用于制備作為 高分子質量標準的酵母染色體和酵母人工染色

聚丙烯酰胺<b>凝膠</b>中<b>DNA</b>的放射自顯影檢測

丙烯酰胺<b>凝膠</b>電泳分離的放射性 <b>DNA</b> 條帶可用放射自顯影的方法檢測。含有放射性 <b>DNA</b> 的聚丙烯酰胺分析<b>凝膠</b>，在放射自顯影前通常要固定和干燥。然而，若要從<b>凝膠</b>中回收放射性 <b>DNA</b> 條帶，則不應固定和干燥。本實驗來源「分子克隆實驗指南第三版」黃培堂等譯。

放射自顯影和從測序<b>凝膠</b>上讀取 <b>DNA</b> 序列實驗

本實驗介紹關于放射自顯影和從測序<b>凝膠</b>上讀取 <b>DNA</b> 序列的過程。本實驗來源于分子克隆實驗指南（第三版）下冊，作者：〔美〕J. 薩姆布魯克 D.W.拉塞爾。

脈沖場<b>凝膠</b>電泳制備<b>DNA</b>（哺乳動物細胞和組織<b>DNA</b>的分離）

本方案敘述了從培養細胞和組織制備 <b>DNA</b> 樣品的方法。病人或動物來源的白細胞也能用作 PFGE 的高分子質量 <b>DNA</b> 樣品。如果確有必要，<b>DNA</b> 也可以從哺乳動物細胞分離出的胞核制備。經驗表明：從胞核制備 <b>DNA</b> 沒有優點，因為從完整細胞制備的 <b>DNA</b> 同樣易于酶切。本實驗來源「分子克隆實驗指南

瓊脂糖<b>凝膠</b>中<b>DNA</b>的回收（DEAE-纖維素膜電泳）

瓊脂糖<b>凝膠</b>中<b>DNA</b>的回收可應用于：（1）哺乳動物細胞轉化；（2）放射性標記。

低熔點瓊脂糖<b>凝膠</b>中<b>DNA</b>的回收（用瓊脂糖酶消化）

可用瓊脂糖酶消化的方法從低熔點瓊脂糖<b>凝膠</b>中回收 <b>DNA</b> ( Bumeister and lehrach 1989)。在這種方法中，瓊脂糖酶使瓊脂糖多聚體水解為雙糖。這樣獲得的 <b>DNA</b> 再經酚抽提、乙醇沉淀進行純化。由于該法較為溫和，因此特別適用從脈沖場瓊脂糖<b>凝膠</b>中 回收高分子質量的 <b>DNA</b>，從恒強